miércoles, 20 de octubre de 2021

Desarrollo embrionario en el pollo

(Ciencias de Joseleg)(Biología)(Reproducción en los seres vivos)(Reproducción en aves) (Introducción) (Temporadas y territorios reproductivos) (Sistema reproductor) (Hormonas sexuales) (Gametogénesis) (Emparejamiento y cortejo) (Selección sexual) (Desarrollo embrionario del pollo) (El huevo) (Nidada e incubación) (Referencias bibliográficas)

 

  Desde que Aristóteles siguió por primera vez su desarrollo de 3 semanas, el pollo doméstico ha sido un organismo favorito para los estudios embriológicos. Es accesible todo el año y se cría fácilmente. Además, a cualquier temperatura particular, su etapa de desarrollo puede predecirse con precisión. Así, se pueden obtener grandes cantidades de embriones en la misma etapa. El embrión de pollo se puede manipular quirúrgicamente y, dado que forma la mayoría de sus órganos de manera muy similar a la de los mamíferos, a menudo ha servido como sustituto de los embriones humanos.

Escisión meroblastica discoidal en un huevo de gallina. (A-D) Cuatro etapas vistas desde el polo animal (el lado dorsal futuro del embrión). (E) Un embrión de escisión temprana visto desde el lado.

Figura 37Escisión meroblastica discoidal en un huevo de gallina. (A-D) Cuatro etapas vistas desde el polo animal (el lado dorsal futuro del embrión). (E) Un embrión de escisión temprana visto desde el lado.

La fertilización del huevo de gallina ocurre en el oviducto, antes de que la albúmina y la cáscara se segreguen sobre él. El huevo es telolecítico (como el del pescado), con un pequeño disco de citoplasma sentado sobre una gran yema.

Al igual que los huevos de pescado, los huevos de yema de las aves se someten a escisión meroblastica discoidal “La división solo afecta a un disco citoplasmático próximo al polo animal y la parte inferior (polo vegetativo) no se segmenta; a continuación, se forma un disco de blastómeros, el blastodermo o blastodisco, a partir del cual se formará el embrión, que reposará sobre la masa vitelina. Se da en peces, reptiles y aves, entre otros”. La escisión se produce solo en el blastodisco, un pequeño disco de citoplasma de 2 a 3 mm de diámetro en el polo animal de la célula del huevo. El primer surco de escisión aparece centralmente en el blastodisco, y otras escisiones siguen para crear un blastodermo de una sola capa (Figura 37). Al igual que en el embrión de pescado, estas escisiones no se extienden en el citoplasma de la yema, por lo que las células de escisión temprana son continuas entre sí y con la yema en sus bases (Figura 38-E).

Posteriormente, las divisiones ecuatoriales y verticales dividen el  blastodermo en un tejido de cinco a seis capas de células de espesor. Estas células se unen entre sí mediante uniones estrechas.

Formación del blastodermo de dos capas del embrión de pollo.  (A, B) Las células primarias de hipoblasto se deslaminan individualmente para formar islas de células debajo del epiblasto. (C) Las células de hipoblasto secundarias del margen posterior (la hoz de Koller y las células marginales posteriores detrás de él) migran debajo del epiblasto e incorporan las islas de polinvaginación. A medida que el hipoblasto se mueve anteriormente, las células epiblastas se acumulan en la región anterior a la hoz de Koller para formar la veta primitiva. (D) Esta sección sagital de un embrión cerca del margen posterior muestra una capa superior que consiste en un epiblasto central que se introduce en las células de la hoz de Koller (ks) y la zona marginal posterior (mz). Ciertas células se deslaminaron del epiblasto (ep) para formar islas de polinvaginación (pi) de 5 a 20 células cada una. Estas células se unirán a aquellas células hipoblastas (hip) que migran anteriormente de la hoz de Koller para formar la capa inferior (hipoblástica secundaria). (sc, cavidad subgerminal; gwm, margen de la pared germinal.)

Figura 38.  Formación del blastodermo de dos capas del embrión de pollo.  (A, B) Las células primarias de hipoblasto se deslaminan individualmente para formar islas de células debajo del epiblasto. (C) Las células de hipoblasto secundarias del margen posterior (la hoz de Koller y las células marginales posteriores detrás de él) migran debajo del epiblasto e incorporan las islas de polinvaginación. A medida que el hipoblasto se mueve anteriormente, las células epiblastas se acumulan en la región anterior a la hoz de Koller para formar la veta primitiva. (D) Esta sección sagital de un embrión cerca del margen posterior muestra una capa superior que consiste en un epiblasto central que se introduce en las células de la hoz de Koller (ks) y la zona marginal posterior (mz). Ciertas células se deslaminaron del epiblasto (ep) para formar islas de polinvaginación (pi) de 5 a 20 células cada una. Estas células se unirán a aquellas células hipoblastas (hip) que migran anteriormente de la hoz de Koller para formar la capa inferior (hipoblástica secundaria). (sc, cavidad subgerminal; gwm, margen de la pared germinal.)

Cuando una gallina ha puesto un huevo, el blastodermo contiene unas 20,000 células. En este momento, la mayoría de las células de la zona pelúcida permanecen en la superficie, formando el epiblasto, mientras que otras células de la pelúcida área se deslaminaron y migraron individualmente hacia la cavidad subgerminal para formar las islas de polinvaginación (hipoblasto primario), un archipiélago de agrupaciones desconectadas que contiene 5-20 células cada una (Figura 38-B). Poco después, una lámina de células del margen posterior del blastodermo (que se distingue de las otras regiones del margen por la hoz de Koller, un engrosamiento local) migra anteriormente para unirse a las islas de polinvaginación, formando así el hipoblasto secundario.

Movimientos celulares de la línea primitiva del embrión de pollo. (A-C) Vista dorsal de la formación y elongación de la veta primitiva. El blastodermo se observa en (A) 3-4 horas, (B) 7-8 horas y (C) 15–16 horas después de la fertilización. Los primeros movimientos de las células epiblastas que migran se muestran mediante flechas. (D-F) Formación de somitas de notocordio y mesodérmicas a medida que la raya primitiva retrocede, mostrada en (F) 19–22 horas, (E) 23–24 horas, y (F) la etapa de cuatro somitas. Los mapas de destino del epiblasto de pollo se muestran para dos etapas, la etapa de raya primitiva definitiva (C) y la neurulación (F). El endodermo ya ha penetrado debajo del epiblasto, y se observa una extensión convergente en la línea media.

Figura 39.  Movimientos celulares de la línea primitiva del embrión de pollo. (A-C) Vista dorsal de la formación y elongación de la veta primitiva. El blastodermo se observa en (A) 3-4 horas, (B) 7-8 horas y (C) 15–16 horas después de la fertilización. Los primeros movimientos de las células epiblastas que migran se muestran mediante flechas. (D-F) Formación de somitas de notocordio y mesodérmicas a medida que la raya primitiva retrocede, mostrada en (F) 19–22 horas, (E) 23–24 horas, y (F) la etapa de cuatro somitas. Los mapas de destino del epiblasto de pollo se muestran para dos etapas, la etapa de raya primitiva definitiva (C) y la neurulación (F). El endodermo ya ha penetrado debajo del epiblasto, y se observa una extensión convergente en la línea media.

El blastodermo de dos capas (epiblasto e hipoblasto) se une en el margen del área de opaca, y el espacio entre las capas forma un blastoceloma. Por lo tanto, aunque la forma y la formación del blastodisco aviar difieren de las de la blástula de anfibios, peces o equinodermos, se mantienen las relaciones espaciales generales.

El embrión aviar proviene enteramente del epiblasto. El hipoblasto no contribuye con ninguna célula al embrión en desarrollo. Más bien, las células hipoblastas forman porciones de las membranas externas, especialmente el saco vitelino y el tallo que une la placa de la yema al tubo digestivo endodérmico. Las tres capas germinales del embrión propiamente dicho (más una cantidad considerable de membrana extraembriónica) se forman a partir de las células epiblastas. Los mapas de destino del epiblasto de pollo se muestran en (Figura 39).

La principal característica estructural de la gastrulación aviaria, reptiliana y de mamíferos es el tallo primitivo. Esta raya se ve primero como un engrosamiento del epiblasto en la región posterior del embrión “hacia el dorso”, justo delante de la hoz de Koller (Figura 39-A). Este engrosamiento es causado por la entrada de precursores endodérmicos desde el epiblasto al blastoceloma y por la migración de células desde la región lateral del epiblasto posterior hacia el centro (Figura 39-B). Cuando estas células entran en la línea primitiva, la línea se alarga hacia la región de la cabeza futura. Al mismo tiempo, las células de hipoblasto secundarias continúan migrando anteriormente del margen posterior del blastodermo. El alargamiento del tallo primitivo parece ser coextensivo con la migración anterior de estas células de hipoblasto secundario. El tallo eventualmente se extiende 60–75% de la longitud del área pelúcida.

El tallo primitivo define los ejes del embrión. Se extiende desde la parte posterior a la anterior; las células migratorias entran a través de su lado dorsal y se mueven hacia su lado ventral; y separa la parte izquierda del embrión de la derecha. Los elementos cercanos al tallo serán las estructuras mediales (centrales), mientras que los más alejados serán las estructuras distales (laterales) (Figura 39-C, E).

Cuando las células convergen para formar el tallo primitivo, se forma una depresión dentro del propio tallo. Esta depresión se denomina surco primitivo y sirve como una abertura a través de la cual las células migratorias pasan al blastoceloma. Por lo tanto, el surco primitivo es análogo al blastoporo de anfibios. En el extremo anterior del tallo primitivo hay un engrosamiento regional de las células llamado nudo primitivo o nodo de Hensen. El centro de este nodo contiene una depresión en forma de embudo (a veces llamada fosa primitiva) a través de la cual las células pueden pasar al blastoceloma. El nodo de Hensen es el equivalente funcional del labio dorsal del blastoporo de anfibios (es decir, el organizador) y el escudo embrionario de los peces.

Migración de células endodérmicas y mesodérmicas a través del tallo primitivo. (A) La micrografía electrónica de barrido muestra que las células epiblastas pasan al blastoceloma y extienden sus extremos apicales para convertirse en células de botella. (B) Estereograma de un embrión de pollo gástrico, que muestra la relación de la línea primitiva, las células migratorias y las dos capas originales del blastodermo. La capa inferior se convierte en un mosaico de células hipoblastos y endodérmicas; Las células de hipoblasto finalmente se separan para formar una capa debajo del endodermo y contribuyen al saco vitelino.

Figura 40.  Migración de células endodérmicas y mesodérmicas a través del tallo primitivo. (A) La micrografía electrónica de barrido muestra que las células epiblastas pasan al blastoceloma y extienden sus extremos apicales para convertirse en células de botella. (B) Estereograma de un embrión de pollo gástrico, que muestra la relación de la línea primitiva, las células migratorias y las dos capas originales del blastodermo. La capa inferior se convierte en un mosaico de células hipoblastos y endodérmicas; Las células de hipoblasto finalmente se separan para formar una capa debajo del endodermo y contribuyen al saco vitelino.

Tan pronto como el tallo primitivo se ha formado, las células epiblastas comienzan a migrar a través de ella y hacia el blastoceloma (Figura 40). El tallo primitivo tiene una población celular en continuo cambio. Las células que migran a través del nodo de Hensen pasan al blastoceloma y migran en la parte anterior, formando las vísceras superiores, cabeza del mesodermo y notocorda; Las células que pasan a través de las porciones laterales de la línea primitiva dan lugar a la mayoría de los tejidos endodérmicos y mesodérmicos. A diferencia del mesodermo de Xenopus, que migra como láminas de células al blastoceloma, las células que ingresan en el interior del embrión aviar ingresan como individuos después de sufrir una transformación epitelial a mesenquimatosa. Se cree que la descomposición de la lámina basal y la liberación de estas células en el embrión se llevan a cabo en el nodo de Hensen a lo largo del tallo primitivo por un factor de dispersión, una proteína de 190 kDa segregada por las células cuando entran en la hendidura. El factor de dispersión puede convertir las láminas epiteliales en células mesenquimales de varias maneras, y es probable que esté involucrado tanto en la disminución de la expresión de E-cadherina como en la prevención del funcionamiento de la E-cadherina.

Las primeras células que migran a través del nodo de Hensen son aquellas destinadas a convertirse en el endodermo faríngeo de las vísceras superiores. Una vez dentro del blastoceloma, estas células endodérmicas migran anteriormente y eventualmente desplazan a las células hipoblastas, lo que hace que las células hipoblastas se confinen a una región en la porción anterior del área pelúcida. Esta región, la media luna germinal, no forma ninguna estructura embrionaria, pero contiene los precursores de las células germinales, que luego migran a través de los vasos sanguíneos a las gónadas. Las siguientes células que entran en el blastoceloma a través del nódulo de Hensen también se mueven en sentido anterior, pero no se mueven tan ventralmente como las células endodérmicas presuntivas. Más bien, permanecen entre el endodermo y el epiblasto para formar la cabeza del mesénquima y el mesodermo de la placa precordena. Estas células de ingreso temprano se mueven en sentido anterior, empujando hacia arriba la región de la línea media anterior del epiblasto para formar el proceso de la cabeza (Figura 41). Así, la cabeza del embrión aviar se forma anterior (rostral) al nodo de Hensen. Las siguientes células que migran a través del nodo de Hensen se convierten en células de acordesodermo (notocordas). Estas células se extienden hasta el presunto cerebro medio, donde se encuentran con la placa precordal. El cerebro posterior y el tronco se forman a partir del cordamesodermo a nivel del nodo de Hensen y caudal a él.

Mientras tanto, las células continúan migrando hacia adentro a través de la porción lateral del tallo primitivo. Cuando entran en el blastoceloma, estas células se separan en dos capas. La capa profunda se une al hipoblasto a lo largo de su línea media y desplaza las células del hipoblasto a los lados. Estas células de movimiento profundo dan lugar a todos los órganos endodérmicos del embrión, así como a la mayoría de las membranas extraembrionarias (el hipoblasto forma el resto). La segunda capa migratoria se extiende entre este endodermo y el epiblasto, formando una capa suelta de células. Estas células de la capa media generan las porciones mesodérmicas de las membranas embrionarias y extraembrionarias. A las 22 horas de incubación, la mayoría de las células endodérmicas presuntas se encuentran en el interior del embrión, aunque las células mesodérmicas presuntas continúan migrando hacia adentro durante más tiempo.

Ahora comienza una nueva fase de la gastrulación. Mientras continúa la ingresión mesodérmica, el tallo primitivocomienza a retroceder, moviendo el nodo de Hensen desde cerca del centro de la pelícida del área a una posición más posterior (ver Figura 41). En su retirada el tallo deja a su paso el eje dorsal del embrión y la notocorda. A medida que el nodo se mueve hacia atrás, la notocorda se establece, comenzando en el nivel del futuro cerebro medio. Mientras que la parte anterior de la notocorda se forma por la ingresión de células a través del nódulo de Hensen, la notocorda posterior (después de la somita 17 en el pollo) se forma a partir de la condensación del tejido mesodérmico que ha ingerido a través de la línea primitiva (es decir, no a través del nodo de Hensen). Esta parte de la notocorda se extiende posteriormente para formar la cola del embrión. Finalmente, el nodo de Hensen regresa a su posición más posterior, formando la región anal. En este momento, todas las células endodérmicas y mesodérmicas presuntas han ingresado en el embrión, y el epiblasto está compuesto completamente de células ectodérmicas presuntas.

La gastrulación de los pollitos de aproximadamente 24 a 28 horas. (A) El tallo primitivo en plena extensión (24 horas). El proceso de la cabeza (notocorda anterior) se puede ver extendiéndose desde el nodo de Hensen. (B) Etapa de dos somitas (25 horas). El endodermo faríngeo se ve anteriormente, mientras que la notocorda anterior empuja hacia arriba el proceso de la cabeza por debajo. El tallo primitivo está retrocediendo. (C) Etapa cuatro-somitas (27 horas). (D) A las 28 horas, el tallo primitivo ha regresado a la porción caudal del embrión. (E) Regresión del tallo primitivo, dejando el notocordio a su paso. Varios puntos de la racha (representados por letras) fueron seguidos después de que alcanzó su longitud máxima. El tiempo representa horas después de alcanzar la longitud máxima (la línea de referencia, aproximadamente 18 horas después de la incubación)

Figura 41.  La gastrulación de los pollitos de aproximadamente 24 a 28 horas. (A) El tallo primitivo en plena extensión (24 horas). El proceso de la cabeza (notocorda anterior) se puede ver extendiéndose desde el nodo de Hensen. (B) Etapa de dos somitas (25 horas). El endodermo faríngeo se ve anteriormente, mientras que la notocorda anterior empuja hacia arriba el proceso de la cabeza por debajo. El tallo primitivo está retrocediendo. (C) Etapa cuatro-somitas (27 horas). (D) A las 28 horas, el tallo primitivo ha regresado a la porción caudal del embrión. (E) Regresión del tallo primitivo, dejando el notocordio a su paso. Varios puntos de la racha (representados por letras) fueron seguidos después de que alcanzó su longitud máxima. El tiempo representa horas después de alcanzar la longitud máxima (la línea de referencia, aproximadamente 18 horas después de la incubación)

Como consecuencia de la secuencia mediante la cual se establecen el mesodermo de la cabeza y la notocorda, los embriones aviares (y mamíferos) exhiben un claro gradiente anterior-posterior de la madurez del desarrollo. Mientras que las células de las porciones posteriores del embrión están experimentando gastrulación, las células en el extremo anterior ya están comenzando a formar órganos (la cabeza se forma primero y la cola después). Durante los próximos días, el extremo anterior del embrión está más avanzado en su desarrollo (después de haber tenido un "inicio" tardío) con respecto al extremo posterior.

Mientras que las células mesodérmicas y endodérmicas presuntas se están moviendo hacia adentro, los precursores ectodérmicos proliferan. Por otra parte, las células ectodérmicas migran para rodear la yema de huevo por epibolia. El encierro de la yema por el ectodermo (una vez más reminiscencia del epibolio del ectodermo de anfibios) es una tarea hercúlea que toma la mayor parte de los 4 días siguientes para completarse.

Implica la producción continua de nuevo material celular y la migración de las presuntas células ectodérmicas a lo largo del lado inferior de la envoltura vitelina. Curiosamente, solo las células del borde exterior del área de opaca se adhieren firmemente a la envoltura vitelina. Estas células son intrínsecamente diferentes de las otras células de blastodermo, ya que pueden extender enormes procesos citoplásmicos (500 μm) a la envoltura vitelina. Se cree que estos filopodios alargados son el aparato locomotor de estas células marginales, mediante el cual tiran de las otras células ectodérmicas alrededor de la yema. Los filopodios parecen unirse a la fibronectina, una proteína laminar que es un componente de la envoltura vitelina del pollo. Si el contacto entre las células marginales y la fibronectina se rompe experimentalmente (al agregar un polipéptido soluble similar a la fibronectina), la retracción de los filopodios y la migración epidérmica cesa.

Así, a medida que la gastrulación aviar se acerca a su fin, el ectodermo ha rodeado la yema, el endodermo ha reemplazado al hipoblasto y el mesodermo se ha posicionado entre estas dos regiones. Hemos identificado muchos de los procesos involucrados en la gastrulación aviar, pero seguimos ignorando los mecanismos por los cuales muchos de estos procesos se llevan a cabo.

Mientras que la formación de los ejes corporales se logra durante la gastrulación, su especificación ocurre antes, durante la etapa de escisión.

El eje dorsal-ventral (parte posterior del vientre) es crítico para la formación del hipoblasto y para el desarrollo posterior del embrión. Este eje se establece cuando las células de escisión del blastodermo establecen una barrera entre la albúmina básica (pH 9.5) que se encuentra por encima del blastodisco y el espacio subgerminal ácido (pH 6.5) que se encuentra debajo. El agua y los iones de sodio se transportan desde la albúmina a través de las células hasta el espacio subgerminal, creando una diferencia de potencial de membrana de 25 mV a través de la capa de células epiblastas (positiva en el lado ventral de las células). Este proceso distingue dos lados del epiblasto: un lado que mira a la albúmina negativa y básica, que se convierte en el lado dorsal, y un lado que mira al fluido del espacio subgerminal positivo y ácido, que se convierte en el lado ventral. Este eje se puede invertir experimentalmente invirtiendo el gradiente de pH o invirtiendo la diferencia de potencial a través de la capa celular.

La conversión del blastodermo radialmente simétrico en una estructura bilateralmente simétrica está determinada por la gravedad. A medida que el óvulo atraviesa el tracto reproductivo de la gallina, gira alrededor de 20 horas en la glándula de la concha. Esta hilatura, a una velocidad de 10 a 12 revoluciones por hora, desplaza la yema de modo que sus componentes más ligeros se encuentran debajo de un lado del blastodermo. Esto alza ese extremo del blastodermo, y ese extremo se convierte en la parte posterior del embrión, la parte donde comienza la formación del tallo primitivo.

Organización anterior-posterior por gravedad del embrión del pollo. La rotación en la glándula de la cáscara (A) da como resultado que los componentes más ligeros de la yema empujen hacia arriba a un lado del blastodermo (B). Esa región más elevada se convierte en la parte posterior del embrión (C).

Figura 42.  Organización anterior-posterior por gravedad del embrión del pollo. La rotación en la glándula de la cáscara (A) da como resultado que los componentes más ligeros de la yema empujen hacia arriba a un lado del blastodermo (B). Esa región más elevada se convierte en la parte posterior del embrión (C).

Regulación del blastodermo de pollo. Cuando el blastodermo se divide en cuatro partes, cada parte puede iniciar la gastrulación y dar lugar a un embrión (clonación embrionaria). Por lo general, solo las células de la zona marginal posterior pueden formar una raya primitiva e inhiben a otras áreas de la zona marginal para que no lo hagan.

Figura 43.  Regulación del blastodermo de pollo. Cuando el blastodermo se divide en cuatro partes, cada parte puede iniciar la gastrulación y dar lugar a un embrión (clonación embrionaria). Por lo general, solo las células de la zona marginal posterior pueden formar una raya primitiva e inhiben a otras áreas de la zona marginal para que no lo hagan.

No se sabe qué interacciones hacen que esta porción del blastodermo se convierta en el margen posterior e inicie la gastrulación. La capacidad de iniciar el tallo primitivo se encuentra en toda la zona marginal, y si el blastodermo se separa en partes, cada una con su propia zona marginal, cada parte formará su propio tallo primitivo (Figura 43). Sin embargo, una vez que se ha formado una zona marginal posterior (PMZ por sus siglas en inglés), controla las otras regiones del margen. Estas células PMZ no solo inician la gastrulación, sino que también evitan que otras regiones del margen formen sus propios tallos primitivos.

Ahora parece evidente que la PMZ contiene células que actúan como el equivalente del centro Nieuwkoop de anfibios. Cuando se coloca en la región anterior de la zona marginal, un injerto de tejido de la zona marginal posterior (posterior y sin incluir la hoz de Koller) puede inducir una línea primitiva y un nodo de Hensen sin que las células contribuyan a ninguna de las estructuras. Al igual que el centro Nieuwkoop de anfibios, se cree que esta región es el lugar donde la localización de la β-catenina en el núcleo y la señal de la familia TGF-β coinciden. La zona marginal posterior es la única región del Vg1 secretor de embriones.

Las células de epiblasto y capa media en la porción anterior de la hoz de Koller se convierten en el nodo de Hensen. La parte posterior de la hoz de Koller contribuye a la parte posterior de la línea primitiva (Figura 44).

Formación del nodo de Hensen a partir de la hoz de Koller. (A) Diagrama del extremo posterior de un embrión temprano (antes de la raya), que muestra las células marcadas con tintes fluorescentes en las fotografías. (B) Justo antes de la gastrulación, las células en el extremo anterior de la hoz de Koller (el epiblasto y la capa media) se marcaron con colorante verde. Las células de la porción posterior de la hoz de Koller se marcaron con tinte rojo. A medida que las células migran, las células anteriores formaron el nodo de Hensen y sus derivados de notocordas. Las células posteriores formaron la región posterior de la línea primitiva. El tiempo después de la inyección de tinte está etiquetado en cada fotografía.

Figura 44.  Formación del nodo de Hensen a partir de la hoz de Koller. (A) Diagrama del extremo posterior de un embrión temprano (antes de la raya), que muestra las células marcadas con tintes fluorescentes en las fotografías. (B) Justo antes de la gastrulación, las células en el extremo anterior de la hoz de Koller (el epiblasto y la capa media) se marcaron con colorante verde. Las células de la porción posterior de la hoz de Koller se marcaron con tinte rojo. A medida que las células migran, las células anteriores formaron el nodo de Hensen y sus derivados de notocordas. Las células posteriores formaron la región posterior de la línea primitiva. El tiempo después de la inyección de tinte está etiquetado en cada fotografía.

Desde hace tiempo se sabe que el nodo de Hensen es el equivalente aviar del labio blastoporo dorsal de anfibios, ya que es (1) el sitio donde comienza la gastrulación, (2) la región cuyas células se convierten en el cordamesodermo, y (3) la región cuyas células pueden organice un segundo eje embrionario cuando se trasplanta en otras ubicaciones de la gástrula. Además, el trasplante de la hoz de Koller también puede causar la formación de nuevos ejes, y las células de la capa media en la hoz de Koller expresan goosecoides, al igual que las células del organizador de Spemann.

Como es el caso en todos los vertebrados, el mesodermo dorsal es capaz de inducir la formación del sistema nervioso central en el ectodermo que lo recubre. Las células del nodo de Hensen y sus derivados actúan como el organizador de los anfibios, y secretan proteínas Cordina, Noggina y Nodal. Los factores de crecimiento de fibroblastos se producen en el nodo de Hensen y en la línea primitiva, y las perlas que contienen ciertos FGF pueden inducir la expresión neuronal del tronco y del cerebro posterior en las células epiblastas.

Para la asimetría izquierda-derecha en el embrión de pollo. (A) Lado izquierdo: en el lado izquierdo del nodo de Hensen, se expresan sonic hedgehog (shh) y lefty-1. Lefty-1 bloquea la expresión fgf8, mientras que sonic hedgehog activa la expresión de caronte. Mientras tanto, el ácido retinoico permite la expresión de Lefty-1 a lo largo de la línea media ventral. La expresión de Caronte bloquea las proteínas morfogenéticas óseas (BMP) en el lado izquierdo, que de otro modo bloquearían la expresión de nodal y Lefty-2. En presencia de Nodal y Lefty-2, el gen pitx2 se activa y el gen del caracol (cSnR) se reprime. Pitx2 está activo en los diversos primordios de órganos y especifica el lado que se dejará. En el lado derecho del embrión, la activina se expresa junto con el receptor de activina IIa. Esto activa FGF8, una proteína que bloquea la expresión de caronte. En ausencia de Caronte, BMP reprime la activación de nodal y lefty-2. Esto permite que el gen caracol esté activo mientras que el gen pitx2 permanece reprimido. (B, C) Vistas dorsales y en primer plano de la hibridación in situ del ARNm de sonic hedgehog. (D, E) Vistas dorsales y en primer plano del mensaje del receptor IIa de activina.

Figura 45Para la asimetría izquierda-derecha en el embrión de pollo. (A) Lado izquierdo: en el lado izquierdo del nodo de Hensen, se expresan sonic hedgehog (shh) y lefty-1. Lefty-1 bloquea la expresión fgf8, mientras que sonic hedgehog activa la expresión de caronte. Mientras tanto, el ácido retinoico permite la expresión de Lefty-1 a lo largo de la línea media ventral. La expresión de Caronte bloquea las proteínas morfogenéticas óseas (BMP) en el lado izquierdo, que de otro modo bloquearían la expresión de nodal y Lefty-2. En presencia de Nodal y Lefty-2, el gen pitx2 se activa y el gen del caracol (cSnR) se reprime. Pitx2 está activo en los diversos primordios de órganos y especifica el lado que se dejará. En el lado derecho del embrión, la activina se expresa junto con el receptor de activina IIa. Esto activa FGF8, una proteína que bloquea la expresión de caronte. En ausencia de Caronte, BMP reprime la activación de nodal y lefty-2. Esto permite que el gen caracol esté activo mientras que el gen pitx2 permanece reprimido. (B, C) Vistas dorsales y en primer plano de la hibridación in situ del ARNm de sonic hedgehog. (D, E) Vistas dorsales y en primer plano del mensaje del receptor IIa de activina.

Como hemos visto, el cuerpo de los vertebrados no es simétrico. Más bien, tiene distintos lados derecho e izquierdo. El corazón y el bazo, por ejemplo, están generalmente en el lado izquierdo del cuerpo, mientras que el hígado está generalmente en el lado derecho. La distinción entre los lados derecho e izquierdo de los vertebrados está regulada por dos proteínas principales: el factor paracrino nodal y el factor de transcripción Pitx2. Sin embargo, el mecanismo por el cual la expresión génica nodal se activa en el lado izquierdo del cuerpo difiere entre las clases de vertebrados. La facilidad con que pueden manipularse los embriones de pollo ha permitido a los científicos dilucidar las vías de discriminación de izquierda a derecha en aves más fácilmente que en otros vertebrados.

A medida que la línea primitiva alcanza su longitud máxima, se genera una cascada de genes homeoticos diferencial entre la derecha y la izquierda. Esto permite generar los órganos asimétricos como el hígado, el páncreas, los pulmones y el corazón.

El endodermo origina el epitelio de revestimiento interno de los sistemas digestivo, inmunológico y respiratorio, y los órganos pueden visualizarse desde el segundo día (48 h) cuando se forma el hígado. La formación del sistema digestivo se completó en el día 12. Los órganos del sistema respiratorio comienzan en el cuarto día como un tejido desorganizado e indiferenciado. Su diferenciación completa se observa a los 10 días de la incubación, sin embargo, hasta los 19 días no se observó la siringe. La formación del sistema inmune al décimo día se observó con la formación del bazo, el timo y la bolsa cloacal. El estudio de la organogénesis del pollo basado en capas germinales es muy complejo y está poco explorado, y el estudio de la embriología del pollo es muy importante debido a la importancia económica y al crecimiento del uso de este modelo animal, como los estudios genéticos (Alcântara et al., 2013).

 

La importancia de la selección sexual en aves

(Ciencias de Joseleg)(Biología)(Reproducción en los seres vivos)(Reproducción en aves) (Introducción) (Temporadas y territorios reproductivos) (Sistema reproductor) (Hormonas sexuales) (Gametogénesis) (Emparejamiento y cortejo) (Selección sexual) (Desarrollo embrionario del pollo) (El huevo) (Nidada e incubación) (Referencias bibliográficas)

 

 ¿Qué pueden ganar las hembras quisquillosas o selectas (y los machos selectos) de sus preferencias para las parejas capaces de proporcionarles canciones atractivas, adornos, exhibiciones y similares? Esta pregunta realmente se relaciona con el valor adaptativo de la elección de pareja y aborda las causas evolutivas a largo plazo del comportamiento femenino o masculino de una elección, no las causas fisiológicas inmediatas a corto plazo del comportamiento de un individuo determinado. La distinción es considerada esencial por la mayoría de los biólogos del comportamiento, que distinguen entre dos tipos de preguntas: a saber, preguntas próximas que tratan con los mecanismos internos que permiten a los individuos realizar ciertas acciones, en lugar de preguntas finales que examinan el evolutivo a largo plazo, es decir explicaciones de comportamientos.

Esta sección se enfoca principalmente en las causas últimas del comportamiento de las aves; por qué, por ejemplo, los individuos que prefieren ciertos atributos en sus parejas tienen más probabilidades de dejar descendientes sobrevivientes que si tuvieran preferencias diferentes. La investigación sobre el valor adaptativo de las características de los animales complementa, pero no reemplaza, los estudios sobre las causas inmediatas del comportamiento. Ambos son necesarios para pintar una imagen completa del comportamiento animal.

Hay muchas razones por las cuales una hembra podría obtener beneficios reproductivos de su elección de pareja o parejas. Al estudiar la elección de pareja femenina, debemos considerar la posibilidad de que las preferencias femeninas no sean realmente adaptativas, sino que surjan a través de la selección que favorezca a los machos más capaces de persuadir a las hembras para que se junten con ellos.

Esta “hipótesis de publicidad vacía” sugiere que las hembras son atraídas a aceptar espermatozoides de parejas persuasivas que realmente no tienen nada de valor que ofrecerles, solo el cortejo que activa los mecanismos próximos subyacentes en el comportamiento de apareamiento femenino. Sin embargo, bajo este escenario, incluso si las hembras no ganan nada directamente de su pareja sexual, las hembras que prefieren a los machos más estimulantes tienden a tener hijos que han heredado ese rasgo preferido y que, por lo tanto, son especialmente capaces de adquirir parejas en la próxima generación. Dadas estas condiciones, la hipótesis del anuncio vacío se convierte en la hipótesis del hijo sexy más ampliamente aceptada, con hembra selectas ganando hijos atractivos (incluso si nada más ofrecen los machos) de sus preferencias de pareja.

Estorninos europeos (Sturnus vulgaris).

Figura 30. Estorninos europeos (Sturnus vulgaris).

Un ejemplo que apoya la hipótesis del hijo sexy proviene de los estorninos europeos (Sturnus vulgaris) estudiados en el sur de Alemania, donde los hijos de padres políginos defienden más cajas nido y producen más canciones de cortejo que los hijos de padres monógamos. En otras palabras, la aparente herencia de los hijos de los comportamientos de apareamiento de sus padres permitiría a las hembras producir hijos atractivos al aparearse con machos que pueden adquirir varias parejas en lugar de un solo socio social.

La hipótesis del hijo sexy no es la única explicación adaptativa para la elección de pareja que se centra en un posible beneficio hereditario del comportamiento. Por ejemplo, una hembra selecta podría obtener esperma de un macho hereditario sano cuyos genes, cuando se transmiten a su descendencia, los ayudará a desarrollar un sistema inmunológico fuerte. Las hembras que tomaron decisiones de pareja basadas en señales de salud masculina podrían dar a su progenie un beneficio genético. Del mismo modo, cuando la coloración del plumaje masculino refleja el contenido de carotenoides en los alimentos consumidos, una preferencia femenina por rojos brillantes o amarillos en parejas potenciales podría llevar a las hembras a aparearse con aves que son buenas recolectoras. Si esta capacidad tiene un componente hereditario, las hembras selectivas podrían asegurar parejas con genes que promueven el hábil forrajeo en sus descendientes.

Algunas de las pruebas más claras de los beneficios genéticos provienen de especies en las que los machos no brindan atención parental después de aparearse con la hembra. Las hembras en estas especies a menudo son muy selectivas sobre qué machos escogen como parejas, probablemente para obtener los mejores genes para su descendencia. En el gallo lira común (Tetrao tetrix) de Europa, por ejemplo, las hembras observan atentamente a muchos machos en exhibición antes de elegir uno para fertilizar sus huevos. El mismo macho a menudo es elegido por varias hembras, mientras que la mayoría de los machos en el área de exhibición nunca son seleccionados por ninguna hembra visitante. Los machos con más éxito reproductivo son aquellos que dominan a otros machos y evitan que los adornos de su cola se dañen en las peleas. Por lo general, también son los machos que ocupan los territorios de exhibición central, un logro que a menudo requiere años de intensa competencia.

Agachadiza real (Gallinago media).

Figura 31. Agachadiza real (Gallinago media).

La preferencia femenina por el gallo del territorio central sugiere fuertemente que obtengan buenos genes para su descendencia de estos machos, genes que promueven el desarrollo de descendencia atractiva y / o saludable. En la agachadiza real (Gallinago media), una ave costera de Europa y el norte de Asia, los machos elegidos con mayor frecuencia por las hembras tienen una respuesta inmunitaria más fuerte que sus vecinos menos exitosos, lo que sugiere que se encuentran en la mejor condición corporal general. Una vez más, este resultado sugiere un beneficio indirecto (genético) de la elección de pareja, aunque el hallazgo no descarta absolutamente un beneficio directo (material) en forma de un riesgo reducido de adquirir una enfermedad contagiosa o parásito de las parejas sexuales preferidas.

Con respecto a los beneficios para los machos de la elección de pareja, recuerde que, como se describió anteriormente en este capítulo, los herrerillos comunes masculinos (Cyanistes caeruleus) prefieren las hembras con coronas con reflejos UV relativamente intensas. En un estudio, las hembras de este tipo sobrevivieron mejor que aquellas con menos reflectancia UV en sus plumas. Además, los herrerillos comunes femeninos con un plumaje amarillo más brillante (basado en carotenoides) produjeron garras más grandes y tuvieron mayor éxito en el desarrollo que las hembras con una coloración amarilla más opaca. En la medida en que los machos pueden elegir entre hembras brillantes y opacas como parejas, este estudio sugiere que una preferencia masculina por hembras más brillantes se traduciría en más progenie para el macho. Esta conclusión también puede aplicarse a el gorrión chillón (Petronia petronia), en el cual las hembras con un parche de pecho amarillo más grande pesaron más y tuvieron más crías por año que las hembras con un parche amarillo naturalmente más pequeño. Las preferencias de pareja masculina, como la selección de pareja por parte de las hembras, parecen tener el potencial de aumentar el éxito reproductivo de individuos selectos.

Además, al igual que las hembras pueden ejercer un tipo de elección de pareja después de emparejadas con un macho inferior modificando su inversión en descendencia dependiendo de la calidad de su pareja, también algunas aves macho parecen ajustar su inversión en el cuidado parental en relación con la calidad de su compañera Por ejemplo, la variación en el color de los huevos depositados por las hembras sin manchas (Sturnus unicolor) en España afecta las decisiones masculinas sobre el cuidado de la descendencia resultante.

Estornino negro (Sturnus unicolor).

Figura 32. Estornino negro (Sturnus unicolor).

Los estorninos hembras a los que se les ha quitado algunas plumas de las alas, lo que reduce su condición haciéndoles más difícil volar, ponen huevos azules más pálidos que las aves de control con un complemento completo de primarias. Los machos emparejados con hembras que pusieron huevos pálidos eran padres menos activos cuando comenzaron a aprovisionar sus crías. Se han documentado respuestas masculinas similares al color del huevo en el pájaro gato gris (Dumetella carolinensis), una especie de América del Norte que también pone huevos azules. Las hembras en estas y otras especies probablemente estén bajo presión para proporcionar señales que alienten a sus compañeros sociales a trabajar arduamente para su progenie.

En el ámbito de las decisiones de apareamiento, los beneficios directos son aquellos que devuelven una ventaja directamente al individuo selecto.

Por ejemplo, las hembras pueden preferir los machos que les dan mayores regalos nutricionales a través de la alimentación de cortejo. En el caso de la gaviota patiamarilla (Larus michahellis) estudiada en islas en el noroeste de España, las hembras que habían sido bien alimentadas consistentemente por su compañero de cortejo tenían menos probabilidades de moverse durante la copulación, por lo que era más probable que el macho transfiriera esperma durante el coito y, por lo tanto, era más probable que engendraran las crías de esa hembra. Al hacer que la cópula efectiva dependiera de la capacidad de su pareja para proporcionarle alimentos, una hembra podría usar la elección de pareja para obtener un beneficio material, a saber, las calorías y los nutrientes necesarios para mejorar su condición personal o su capacidad para producir descendencia.

Gaviota patiamarilla (Larus michahellis).

Figura 33. Gaviota patiamarilla (Larus michahellis).

Del mismo modo, en Columbia Británica, Canadá, la tasa a la que las águilas pescadoras (Pandion haliaetus) proporcionan peces a sus compañeros durante la fase de cortejo se relaciona con la probabilidad de que la hembra se deje fecundar. Además, la frecuencia de alimentación de cortejo por parte del macho, que es una función de su capacidad de captura de peces, se correlaciona con la velocidad a la que luego aprovisiona a su descendencia. Por lo tanto, al evaluar la naturaleza de la alimentación de cortejo de un macho, las águilas hembra pueden obtener un forrajero competente como socio en la alimentación de su descendencia. Además, es probable que un forrajero altamente exitoso tenga buena salud en general y, por lo tanto, sea poco probable que transmita enfermedades contagiosas y debilitante a su pareja o su descendencia.

Dependiendo de la especie de ave, la apariencia de un macho, la calidad de sus ornamentos de plumaje, el brillo de los rojos y amarillos en sus plumas, la intensidad de sus exhibiciones de comportamiento, la cantidad de rocas grandes que lleva a su compañero, la naturaleza de sus canciones, e incluso el tamaño del nido que construye para su compañero,

Cernícalo americano (Falco sparverius).

Figura 34. Cernícalo americano (Falco sparverius).

proporcionan indicadores potenciales de su condición fisiológica pasada, actual e incluso futura, y por lo tanto de su salud y capacidad para el cuidado de los pichones. Por ejemplo, en los cernícalos americanos (Falco sparverius) estudiados en Saskatchewan, Canadá, los varones con piel de color naranja brillante (producto de niveles altos de carotenoides) sobre la base del pico tienen menos probabilidades de tener infecciones de parásitos sanguíneos más adelante durante la época de reproducción, cuando el cuidado parental masculino se vuelve importante para la supervivencia de los hijos. Por lo tanto, una preferencia por los machos con este colorante ayudaría a las hembras a adquirir parejas capaces.

Pinzón doméstico (Haemorhous mexicanus).

Figura 35. Pinzón doméstico (Haemorhous mexicanus).

Del mismo modo, en un experimento en el que se inocularon machos pinzones (Haemorhous mexicanus) con un patógeno bacteriano infeccioso, las aves con plumaje más rojo se recuperaron más rápidamente que las aves con plumas más pálidas y amarillas. Debido a que la elección de pareja femenina en esta especie está sesgada a favor de los machos más rojos, las hembras podrían emparejarse con los machos capaces de ser mejores padres porque eran resistentes a ciertas enfermedades.

La calidad de la canción de un macho a veces sirve como otro indicador potencial de su capacidad paterna. En este contexto, es sorprendente que la capacidad de un macho para aprender canciones a temprana edad a menudo sea muy sensible a las condiciones que se experimentan en ese momento. Por ejemplo, los pichones que reciben relativamente poca comida podrían verse perjudicados cuando se trata de imitar las canciones de sus especies. Como resultado, una hembra que escucha a un adulto cantar puede aprender algo sobre su historia pasada de desarrollo, lo que a su vez podría influir en su salud actual y en su capacidad para tener un comportamiento paternal competente. En este sentido, una serie de estudios de laboratorio cuidadosos han demostrado que los machos del gorrión cantor (Melospiza melodia) que están en buenas condiciones aprenden y copian las canciones que escuchan con mayor precisión que los gorriones jóvenes que están en malas condiciones.

Estas mejores canciones proporcionan más adelante información para el apareamiento de hembras: cuando las hembras adultas que reciben una dosis de hormonas para que sean sexualmente sensibles escuchan las canciones grabadas, es más probable que eleven sus colas a la posición precopulatoria cuando escuchan copias precisas de la canción de su especie que cuando escuchan las imitaciones más pobres hechas por los machos desfavorecidos. Este tipo de preferencia podría llevar a la hembra a aparearse y unirse con un macho mejor que el promedio, uno con una buena copia de la canción de su especie, que se correlaciona con su capacidad para brindar una asistencia mejor que el promedio a la hembra y su cría porque fue bien alimentado cuando fue un pichón.

Gorrión cantor “Melospiza melodia” (YouTube)

Figura 36. Gorrión cantor “Melospiza melodia” (YouTube)

La elección de pareja, ya sea por hembras o por machos, tiene consecuencias evolutivas si las diferencias entre los individuos sujetos a elección son hereditarias. Los individuos con los atributos hereditarios favorecidos pueden experimentar un mayor éxito reproductivo que otros de su especie. Con el tiempo, la base genética de la capacidad de cantar un tipo de canción en particular, o de exhibir un adorno en particular, o de participar en ciertas exhibiciones de cortejo, o de suministrar a los compañeros sus alimentos favoritos puede propagarse a través de la especie.

- Los rasgos sexualmente atractivos generalmente tienen costos:

- las canciones pueden atraer tanto a los depredadores como a los compañeros, los adornos hacen que las personas sean más conspicuas para sus enemigos,

los animales enfocados en mostrar a los socios potenciales están menos alertas al peligro,

- y los individuos que ofrecen comida a sus compañeros pasan un tiempo valioso y energía para recoger lo que luego regalan.

Charles Darwin se dio cuenta de que tales rasgos reductores de la supervivencia requerían una explicación especial, que proporcionó en la forma de su teoría de la selección sexual. Argumentó que los ornamentos elaborados, por ejemplo, podrían poner a un macho en un riesgo especial de ataque por parte de los depredadores y, por lo tanto, podría pensarse que está inadaptado, pero si estos ornamentos también aumentan las probabilidades de que un macho adquiera un compañero y se reproduzca con éxito, entonces los efectos sexuales se imponen sobre los de las demás interacciones ecológicas de la selección sexual, esto se refuerza más en los machos al ser el sexo desechable, pues un macho puede fertilizar a muchas hembras, por lo que una especie con pocos machos, pero muy hábiles puede sobrevivir. El mismo argumento se puede aplicar a cualquier atributo que parezca funcionar estrictamente en términos de la competencia entre parejas, ya sean características o rasgos sexualmente atractivos que permitan a los individuos prevalecer sobre otros del mismo sexo en luchas relacionadas con el apareamiento.

La selección sexual ahora se considera generalmente como un componente de la selección natural, en el sentido de que las condiciones requeridas para ambas formas de selección son fundamentalmente similares. Tanto la selección natural como la sexual actúan sobre la variación hereditaria entre individuos en su capacidad para transmitir sus genes, pero la selección sexual lo hace en el contexto estrecho de la competencia por el acceso a las parejas. Sin embargo, la teoría de la selección sexual es valiosa porque ayuda a centrar la atención en el significado de la competencia reproductiva pura. Uno de los beneficios de esta perspectiva es que los investigadores que están alerta a la teoría pueden identificar los rompecabezas que, de otro modo, podrían ignorar, particularmente cuando los machos o las hembras parecen comportarse de maneras que a primera vista parecen reducir sus posibilidades de sobrevivir en primera instancia, o de autolimitación en la fertilización de parejas potenciales secundarias. Como se mencionó anteriormente en el capítulo, la monogamia por parte de los machos es un ejemplo de este tipo de rompecabezas, porque el macho verdaderamente monógamo parece renunciar a las oportunidades de aparearse con más de una hembra.